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概述
腫瘤細(xì)胞的原代培養(yǎng)與正常細(xì)胞的原代培養(yǎng)的條件基本相似。一般常用原代細(xì)胞的基礎(chǔ)培養(yǎng)基，10%血清濃度即可，在原代培養(yǎng)時需加入原代細(xì)胞培養(yǎng)的特制添加物，或原患者血清（1%-2%）以利細(xì)胞生長。用細(xì)胞生長因子如胰島素、氫化可de松、雌激素等等。也可以考慮動物媒介培養(yǎng)。，根據(jù)細(xì)胞種類不同選用不同的促細(xì)胞生長因子。腫瘤組織分離為腫瘤細(xì)胞原代培養(yǎng)的方法主要有組織塊法、酶消化法、鉭網(wǎng)法、脫落細(xì)胞法等。
1.組織塊法
將取得的瘤組織去除脂肪、結(jié)締組織及壞死部分，在平皿中用Hanks液洗3次，剪碎組織，切成1-2mm3小塊，接種于培養(yǎng)瓶（或皿）中，37℃、5%CO2或加蓋并塞在普通恒溫箱中培養(yǎng)。
2.酶消化法
在剪碎組織，切成1-2mm3小塊中，加入0.25%胰蛋白酶或2000U/ml膠原酶，在37℃水浴中消化30min或更長一些，去除消化液，用洗液洗3次，培養(yǎng)基洗1次后，用*培養(yǎng)基懸浮，并用吸管吹打分散制成細(xì)胞懸液，計數(shù)。以（5-10）x108個/L細(xì)胞濃度，在含有10%小牛血清的RPMI、EagleMEM或DMEM中，在37℃、5%CO2下分瓶（或皿）中培養(yǎng)。
3.鉭網(wǎng)法
在一張面積約為1cm2的鉭網(wǎng)上放入上述剪碎的一塊或幾塊腫瘤組織塊（1-2mm3大?。?，用鑷子輕壓，使其粘于網(wǎng)上，再把鉭網(wǎng)放入培養(yǎng)皿中，使網(wǎng)下的組織塊與皿壁緊緊接觸，于37℃、5%CO2下培養(yǎng)，每隔2-3天換液一次，5天后可見有上皮細(xì)胞從網(wǎng)上移出，并能在相當(dāng)于腫瘤組織部位形成純凈的單層上皮細(xì)胞。
4.脫落細(xì)胞法
將新鮮的腫瘤組織去除脂肪和結(jié)締組織，洗液洗2次后，用刀片將腫瘤組織切成細(xì)薄片，在切割的同時有許多上皮細(xì)胞脫落下來，脫落細(xì)胞經(jīng)洗滌后，加入*培養(yǎng)基，便可獲得較純的上層細(xì)胞，于培養(yǎng)瓶（或皿）中，37℃、5%CO2下培養(yǎng)，每隔2-3天換液一次，7-10天上皮細(xì)胞逐漸長成單層。
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